离心分离这事儿，说白了就是给液体选个听话的“大活人”。
那会儿咱们实验室里，离心机像是个老古董，一端上样，转速在那儿似的转，你看着操作手册上的参数，心里一慌：这玩意儿门槛高不高？能不能一次把蛋白分得明明白白？实际上不用如此严谨，只要把机器和样品给“整明白”，它根本就是倒水一样好办。 拿个标准台式离心机举个例子，咱们不用那些复杂的商业实验室配置，买个几十一千块的家用款都行的。别一上来就盯着那个转速旋钮死磕。离心机是个“听话”的机器，它有三招，你得按着顺序来。
第一招，得看它想抓啥。
要是那是个用来收蛋白的，起初看你样本里那些大颗粒杂质。
要是菌体要么粗提物，你得给它盖上盖子，把里面的固体块儿先甩出去。
这时候转速别忒高，先给 2000 转左右，让那些大石头、大碎片先掉底板上。
要是样品忒脏，稠得连眼皮都抬不起来，那得先转 4 个转再上样，不然样品一上来就堵转，机器是转不动的。转够 30 分钟，样子上面那层泥渣子根本就甩干净利落了，这时候把盖子一揭，清个底就完事了。 那要是样品稀了点，像是个水样要么细胞裂解液，这时候就轮到第二招：靠离心力把小颗粒“吸”下来。
这时候转速就得猛上，打到 12000 转。别怕，这玩意儿可没那么多物理限制，只要样品不炸了就行。
这时候你得上个盖子，并且得把里面的盖子扣紧，不然离心力大起来，盖子飞出去砸手里可就尴尬了。转上 60 到 90 分钟，看那上清液是不是干净利落了。
要是里面还有小黑点，那是没分净，得加点浓度高的盐，利用高盐浓度让蛋白沉淀，再回去再跑一次。 实际上大量新手好办犯的第一个毛病，就是转速定得忒高要么忒低，害得溶剂不挂杯。
这时候不用慌，换个思路，就改换转子。离心机转起来的时候，那些转子就像个旋转的筛子。
要是你用的是带网眼的转子，那溶剂在旋转过程中，重力把它往下拉，就像毛巾拧干衣服一样，溶剂会自然挂壁。
要是你用的是那种实心的盖子要么网眼忒密的转子，溶剂往往就剩下一半要么干了。
这时候如何调？挺好办，别动转速了，就把样本装得散一点，要么略微加点水，让样品在转子里多点空位，这样它转的时候更好办“挂”在壁上。 还有个大家常被忽略的细节，就是盖子上的接口。有些盖子带孔，有些不带，有些转子是锥形，有些是直筒。
要是你的盖子孔和转子孔大小不一样，要么形状没对上，离心一劲儿一劲儿，那东西就好办飞出去伤人。
这点根本常识得搞明白，保险第一。 另外，关于温度也是个坑。大量人认定离心机是干热的，但实际上大量生化样品挺怕热。
要是你要放蛋白要么酶蛋白，转速上去了冰水也不得己，得用低速要么不转的状态，盖上盖子，直接放冰箱里。
这时候样本是冷的，转起来的时候温度变化小，酶就不好办失活。
要是突然转起来，样品在离心瞬间受热变性，那剩下的离心机就得报废，样品也得做做实验。 最终，咱们得说说啥时候该用离心机。
不是所有液体都需求折腾，像那种浓度特别低、杂质特别少的细胞液，要么就连是你刚拿出来的葡萄糖注射液，直接放在架子上晾一晾，要么用滤纸过滤掉大颗粒就好。离心器主要是用来对付“大块头”和“细碎屑”的。
比如菌液里那个长长的鞭毛，要么细胞裂解液里那些出于加样忒快而混在一起的大团块。 实际上说到底，离心机就是个高效的过滤器，只是它的过滤原理是靠旋转形成的离心力。想象一下，在地球上撒盐，靠的是重力往下拉。在离心机里，盐微粒就被推到了上面，而水就留在了下面。
只要你能管住好转速，管住好样本的密度，管住好样品的状态，这机器根本就是傻瓜化了。你只需求记住这几点：大颗粒先转，小颗粒靠快转速甩，盖子要戴紧，接口要对准，最怕就是转忒快样品炸了要么转不动样子上。
只要把这几条记牢，用离心器解决大局部分离难题，省事得挺。